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Resumen
A diferencia de Trypanosoma cruzi, agente causal de la enfermedad de Chagas, Trypanosoma rangeli es un parásito infectivo y no patógeno para el humano, pero sí para los vectores del género Rhodnius. Con base en polimorfismos del ADN del cinetoplasto (kADN), del gen miniexón o líder de empalme (Spliced Leader), del espaciador interno transcrito (ITS) y de la subunidad pequeña del ribosoma (SSU rARN), se han descrito varios genotipos de T. rangeli (KP1+/A, B, KP1-/C, KP1-/D y E), los cuales son transmitidos selectivamente por dos líneas filogenéticas de Rhodnius, lo que indica la ocurrencia de procesos coevolutivos entre el parásito y los vectores. La línea Robustus (Rhodnius prolixus, Rhodnius robustus y Rhodnius neglectus) transmite exclusivamente el genotipo KP1+/A y la línea Pallescens (Rhodnius pallescens, Rhodnius colombiensis y Rhodnius ecuadoriensis) transmite el genotipo KP1-/C. Aunque el conocimiento de las bases moleculares de la interacción parásito-vector es todavía escaso, este trabajo presenta observaciones inéditas sobre la capacidad de los genotipos KP1+/A y KP1-/C para completar el ciclo de vida en algunas de las 19 especies de Rhodnius y la detección de factores tripanolíticos en R. prolixus, R. robustus y R. neglectus contra el genotipo KP1-/C y varios genotipos de T. cruzi. Los avances recientes en los estudios de transcripción genómica de T. rangeli, y su comparación con T. cruzi constituyen el punto de partida para entender cabalmente la transmisión vectorial selectiva de T. rangeli y T. cruzi, así como de la patogenia de T. rangeli para el vector y de la incapacidad de T. rangeli y la capacidad de T. cruzipara invadir células del mamífero. © 2015. Acad. Colomb. Cienc. Ex. Fis. Nat. Todos los derechos reservados.
Citas
Abad-Franch, F., Monteiro, F.A., Jaramillo, O. N., Gurgel-Gonçalves, R., Dias, F.B., Diotaiuti, L. 2009. Ecology, evolution, and the long-term surveillance of vector-borne Chagas disease: A multi-scale appraisal of the tribe Rhodniini (Triatominae). Acta Tropica. 110 (2-3):159-177. doi: 10.1016/j.actatropica.2008.06.005.
Abad-Franch, F., Pavan, M.G., Jaramillo-O, N., Palomeque, F.S., Dale, C., Chaverra, D., Monteiro, F.A. 2013. Rhodnius barretti, a new species of Triatominae (Hemiptera: Reduviidae) from western Amazonia. Mem Inst Oswaldo Cruz. 108 Suppl 1: 92-99. doi: 10.1590/0074-0276130434.
Azambuja, P. & García, E.S. 2005. Trypanosoma rangeli inter-actions within the vector Rhodnius prolixus: A mini review. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz. 100 (5): 567-572.
Azambuja, P., Ratcliffe, N.A., García, E.S. 2005. Towards an understanding of the interactions of Trypanosoma cruziand Trypanosoma rangeli within the reduviid insect host Rhodnius prolixus. Acad Bras Cienc. 77 (3): 397-404.
Basseri, H.R., Tew, I.F., Ratcliffe, N.A. 2002. Identification and distribution of carbohydrate moieties on the salivary glands of Rhodnius prolixus and their possible involvement in attachment/invasion by Trypanosoma rangeli. Experimental Parasitology. 100: 226-234.
Basso, B., Castro, I., Introini, V., Gil, P., Truyens, C., Moretti, E. 2007. Vaccination with Trypanosoma rangeli reduces the infectiousness of dogs experimentally infected with Trypanosoma cruzi. Vaccine. 25 (19): 3855-3858.
Basso, B., Moretti, E., Fretes, R. 2008. Vaccination with epimastigotes of different strains of Trypanosoma rangeliprotects mice against Trypanosoma cruzi infection. Mem Inst Oswaldo Cruz. 103 (4): 370-374.
Basso, B., Moretti, E., Fretes, R. 2014. Vaccination with Trypanosoma rangeli induces resistance of guinea pigs to virulent Trypanosoma cruzi. Vet Immunol Immunopathol. 157 (1-2): 119-123. doi: 10.1016/j.vetimm.2013.10.011.
Castro, D.P., Moraes, C.S., González, M.S., Ratcliffe, N.A., Azambuja, P., García, E.S. 2012. Trypanosoma cruzi Immune Response Modulation Decreases Microbiota in Rhodnius prolixus Gut and Is Crucial for Parasite Survival and Development. PLoS ONE. 7 (5): e36591.
D’Alessandro, A. 1976. Biology of Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli Tejera, 1920. In WHR Lumsden & DA Evans (editors), Biology of Kinetoplastida, Vol. 1, Academic Press, London, New York and San Francisco, pp. 327-493.
D’Alessandro, A., Hincapié, O. 1986. Rhodnius neivai: A new experimental vector of Trypanosoma rangeli. Am J Trop Med Hyg. 35: 512-514.
D’Alessandro-Bacigalupo, A., Gore-Saravia, N. 1999. Trypano-soma rangeli. In: Gilles Herbert, M. (Ed.), Protozoal Diseases. Oxford University Press, Oxford, pp. 398-412.
da Rosa, J.A., Mendonça, V.J., Gardim, S., de Carvalho, D.B., de Oliveira, J., Nascimento, J.D., Pinotti, H., Pinto, M.C., Cilense, M., Galvão, C., Barata, J.M. 2014. Study of the external female genitalia of 14 Rhodnius species (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) using scanning electron micros-copy. Parasit Vectors. 7: 17. doi: 10.1186/1756-3305-7-17.
De Stefani-Márquez, M.D., Rodrigues-Ottaiano, C., Mônica Oliveira, R., Pedrosa, A.L., Cabrine-Santos, M., Lages-Silva, E., Ramírez, L.E. 2006. Susceptibility of different triatomine species to Trypanosoma rangeli experimental infection. Vector Borne Zoonotic Dis. 6 (1): 50-56.
Dos-Santos, A.L.A., Dick, C.F., Alves-Bezerra, M., Silveira, T.S., Paes, L.S., Gondim, K.C., Meyer-Fernandes, J.R. 2012. Interaction between Trypanosoma rangeli and the Rhodnius prolixus salivary gland depends on the phosphotyrosine ecto-phosphatase activity of the parasite. International Journal for Parasitology. 42: 819-827.
Dos-Santos, A.L.A., Dick, C.F., Silveira, T.S., Fonseca-de-Souza, A.L., Meyer-Fernandes, J.R. 2013. Trypanosoma rangeli: An alkaline ecto-phosphatase activity is involved with survival and growth of the parasite. Experimental Parasitology. 135: 459-465.
Frasch, A.C.C. 2000. Functional diversity in the trans-sialidase and mucin families in Trypanosoma cruzi. Parasitol Today. 16: 282-286.
Freitas-Mesquita, A.L., & Meyer-Fernandes, J.R. 2014. Ecto-nucleotidases and ecto-phosphatases from Leishmaniaand Trypanosoma Parasites. Proteins and proteomics of Leishmania and Trypanosoma Subcellular Biochemistry. 74: 217-252.
Garcia, E.S., Castro, D.P., Figueiredo, M.B., Genta, F.A., Azambuja, P. 2009. Trypanosoma rangeli: A new perspec-tive for studying the modulation of immune reactions of Rhodnius prolixus. Parasit Vectors. 2 (1): 33. doi: 10.1186/1756-3305-2-33
Garcia, E.S., Genta, F.A., de Azambuja, P., Schaub, G.A. 2010. Interactions between intestinal compounds of triatomines and Trypanosoma cruzi. Trends Parasitol. 26 (10): 499-505. doi: 10.1016/j.pt.2010.07.003
Garcia, E.S., Castro, D.P., Figueiredo, M.B., Azambuja, P. 2012. Parasite-mediated interactions within the insect vector: Trypanosoma rangeli strategies. Parasit Vectors. 5: 105. doi: 10.1186/1756-3305-5-105
Gomes, S.A.O., Fonseca de Souza, A.L., Kiffer-Moreira, T., Dick, C.F., dos Santos, A.L.A., Meyer-Fernandes, J.R.2008. Ecto-phosphatase activity on the external surface of Rhodnius prolixus salivary glands: Modulation by carbohydrates and Trypanosoma rangeli. Acta Tropica. 106: 137-142.
Grisard, E.C., Stoco, P.H., Wagner, G., Sincero, T.C.M., Rotava, G., Rodrigues, J.B., Snoeijer, C.Q., Koerich, L.B., Sperandio, M.M., Bayer-Santos, E., Fragoso, S.P., Goldenberg, S., Triana, O., Vallejo, G.A., Tyler, K.M., Dávila, A.M.R., Steindel, M. 2010. Transcriptomic analyses of the avirulent protozoan parasite Trypanosoma rangeli. Molecular and Biochemical Parasitology. 174: 18-25.
Groot, H., Renjifo, S., Uribe, C. 1950. Nota preliminar sobre inoculación a un voluntario humano con Trypanosoma sp. (Ariarii). An. Soc. Biol. Bogotá. 4: 99-103.Groot, H., Renjifo, S., Uribe, C. 1951. Trypanosoma ariarii. N. sp. from man, found in Colombia. Am. J. Trop. Med. 31: 673-691.
Groot, H. 1952. Further observations on Trypanosoma ariarii in Colombia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1 (4): 585-592.
Groot, H. 1954. Estudios sobre los tripanosomas humanos clasificados como T. rangeli con especial referencia a su evolución en Rhodnius prolixus y a su comparación con T. ariarii. An. Soc. Biol. Bogotá. 6 (3): 109-126.
Guhl, F. & Marinkelle, C.J. 1982. Antibodies against Trypano-soma cruzi in mice infected with T. rangeli. Ann. Trop. Med. Parasitol.76: 361.
GuhI, F., Hudson, L., Marinkelle, C.J., Morgan, S., Jaramillo, C. 1985. Antibody response to experimental Trypanosoma rangeli infection and its implications for immunodiagnosis of South American trypanosomiasis. Acta Trop42: 311-318.
Guhl, F. & Vallejo, G.A. 2003. Trypanosoma (Herpetosoma)rangeli Tejera, 1920: An updated review. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz. 98 (4): 435-442.
Justi, S.A., Russo, C.A., Mallet, J.R., Obara, M.T., Galvão, C. 2014. Molecular phylogeny of Triatomini (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae). Parasit. Vectors. 7: 149. doi: 10.1186/1756-3305-7-149
Machado, P.E., Eger-Mangrich, I., Rosa, G., Koerich, L.B., Grisard, E.C., Steindel, M. 2001. Differential suscepti-bility of triatominae of the genus Rhodnius to Trypanosoma rangeli strains from different geographical origins. Int J Parasitol. 31: 631- 633.
Maia da Silva, F., Rodrigues, A.C., Campaner, M., Takata, C.S.A., Brigido, M.C., Junqueira, A.C.V., Coura, J.R., Takeda, G.F., Shaw, J.J., Texeira, M.M.G. (2004a). Randomly amplified polymorphic DNA analysis of Trypano-soma rangeli and allied species from human, monkeys and other sylvatic mammals of the Brazilian Amazon disclosed a new group and a species-specific marker. Parasitology. 128: 283-294.
Maia da Silva, F., Noyes, H., Campaner, M., Junqueira, A.C.V., Coura, J.R., Añez, N., Shaw, J.J., Stevens, J.R., Teixeira, M.M.G. 2004b. Phylogeny, taxonomy and grouping of Trypanosoma rangeli isolates from man, triatomines and sylvatic mammals from widespread geographical origin based on SSU and ITS ribosomal sequences. Parasitology. 129: 549-561.
Maia da Silva, F., Junqueira, A.C., Campaner, M., Rodrigues, A.C., Crisante, G., Ramírez, L.E., Caballero, Z.C., Monteiro, F.A., Coura, J.R., Añez, N., Teixeira, M.M.2007. Comparative phylogeography of Trypanosoma rangeli and Rhodnius (Hemiptera: Reduviidae) supports a long coexistence of parasite lineages and their sympatric vectors. Mol. Ecol. 16: 3361-3373.
Maia da Silva, F., Marcili, A., Lima, L., Cavazzana Jr., M., Ortiz, P.A., Campaner, M., Takeda, G.F., Paiva, F., Nunes, V.L.B., Camargo, E.P., Teixeira, M.M.G. 2009. Trypanosoma rangeli isolates of bats from Central Brazil: Genotyping and phylogenetic analysis enable description of a new lineage using spliced-leader gene sequences. Acta Trop. 109: 199-207.
Marinkelle, C.J. 1968a. Triatoma dimidiata capitata, a natural vector of Trypanosoma rangeli in Colombia. Rev Biol Trop. 15: 203-205.
Marinkelle, C.J. 1968b. Pathogenicity of Trypanosoma rangeli for Rhodnius prolixus Stal in nature. J Med Entomol 5: 497- 499.Mello, C.B., Azambuja, P., Garcia, E.S., Ratcliffe, N.A. 1996. Differential in vitro and in vivo behavior of three strains of Trypanosoma cruzi in the gut and hemolymph of Rhodnius prolixus. Exp Parasitol. 82 (2): 112-121.
Meneguetti, D.U.O., Soares, E.B., Campaner, M., Camargo, L.M.A. 2014. First report of Rhodnius montenegrensis (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) infection by Trypano-soma rangeli. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. 47 (3): 374-376.doi:10.1590/0037-8682-0179-2013
Organización Panamericana de Salud. 2007. Estimación cuan-titativa de la enfermedad de Chagas en las Américas. Montevideo: (OPS/HDM/CD/425-06); pp. 6-17.Organización Mundial de la Salud. 2014. La enfermedad de Chagas (Tripanosomiasis Americana). Nota descriptiva N° 340. 2014. Fecha de consulta: 4 de septiembre de 2014. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs340/es/index.htm
Paláu, M.T., Mejía, A.J., Vergara, U. Zúñiga, C.A. 2003. Action of Trypanosoma rangeli in Infections with virulent Trypanosoma cruzi populations. Memorias do Instituto Oswaldo Cruz. 98 (4): 543-548.
Pereira, M.E.A. & Moss, D. 1985. Neuraminidase activity in Trypanosoma rangeli. Molecular and Biochemical Parasitology. 15: 95-103.
Pulido, X.C., Pérez, G., Vallejo, G.A. 2008. Preliminary charac-terization of a Rhodnius prolixus hemolymph trypanolytic protein, this being a determinant of Trypanosoma rangeli KP1(+) and KP1(-) subpopulations’ vectorial ability. Memorias do Instituto Oawaldo Cruz. 103 (2): 172-179.
Salazar-Antón, F., Urrea, D.A., Guhl, F., Arévalo, C., Azofeifa G., Urbina A., Blandón-Naranjo, M., Sousa, O.E., Zeledón, R., Vallejo, G.A. 2009. Trypanosomarangeligenotypes association with Rhodnius prolixus and R. pallescens allopatric distribution in Central America. Infection, Genetics and Evolution. 9: 1306-1310.
Schaub, G.A. 2009. Interactions of Trypanosomatids and Triatomines. In Stephen J. Simpson and Jerome Casas: Advances in Insect Physiology, Vol. 37, Burlington: Academic Press. pp.177-242. ISBN: 978-0-12-374829-4.
Schofield, C.J. & Dujardin, J.P. 1999. Theories on the evolution of Rhodnius. Actualidades Biológicas. 21: 183-197.
Stoco, P.H., Wagner, G., Talavera-Lopez, C., Gerber, A., Zaha, A., Thompson, C.E., Bartholomeu, D.C., Lückemeyer, D.D., Bahia, D., Loreto, E., Prestes, E.B., Lima, F.M., Rodrigues-Luiz, G., Vallejo, G.A., Filho, J.F., Schenkman, S., Monteiro, K.M., Tyler, K.M., Almeida, L.G., Ortiz, M.F., Chiurillo, M.A., Moraes, M.H., Cunha Ode. L., Mendonça-Neto, R., Silva, R., Teixeira, S.M., Murta, S.M., Sincero, T.C., Mendes, T.A., Urmenyi, T.P., Silva, V.G., Da Rocha, W.D., Andersson, B., Romanha, A.J., Steindel, M., Vasconcelos, A.T., Grisard, E.C. 2014. Genome of the Avirulent Human-Infective Trypanosome-Trypanosoma rangeli. PLoS Negl. Trop. Dis. 8 (9): e3176. doi: 10.1371/journal.pntd.0003176
Suárez, Y.,Vega, N., Zabala, D., Granada, Y., Roa, L., Gaitán X., Alvarado, U., Serrato C., Montilla, M., Texeira, M., Urrea, D., Villa, L., Carranza, J.C., Vallejo G.A. 2011. Factores tripanolíticos de la hemolinfa de Rhodnius prolixusque actúan sobre Trypanosoma cruzi II, V y VI, pero no sobre T. cruzi I, sugieren una transmisión selectiva de genotipos en Colombia, Venezuela y Centroamérica. Memorias del XX Congreso Latinoamericano de Parasitología Tropical y XV Congreso de Parasitología y Medicina Tropical. Biomédica. Bogotá Colombia. Octubre de 2011.
Suárez, Y., Gaitán, X., Roa, L.A., Carranza, J.C., Vallejo, G.A.2012. La presencia de factores tripanolíticos en el estómago de Rhodnius prolixus contribuye a la transmisión selectiva de genotipos de Trypanosoma cruzi y T. rangeli en América Latina. Memorias del XLVII Congreso Nacional de Ciencias Biológicas. Santiago de Cali, Colombia, octubre de 2012.
Suárez Y., González C.I., Díaz, M.L., Olaya, J.L., Gutiérrez, S., Carranza, J.C., Vallejo, G.A. 2013. Análisis pro-teómico de diferentes especies de triatominos para iden-tificar factores asociados a la transmisión selectiva de genotipos de Trypanosoma cruzi y T. rangeli en América Latina. Memorias del XXI Congreso de la Federación Latinoamericana de Parasitología (FLAP), Guayaquil, Ecuador. Octubre de 2013.
Uribe, C. 1929. Infección del Rhodnius prolixus Stahl por Trypano-soma cruzi y Trypanosoma rangeli. Revista Médico-Quirúrgica de los Hospitales. Bogotá. 3 (20): 133-137.
Urrea, D.A., Carranza, J.C., Cuba-Cuba, C.A., Gurgel-Gonçalves, R., Guhl, F., Schofield, C.J., Triana O., Vallejo, G.A. 2005. Molecular characterisation of Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius ecuadoriensis in Perú, R. colombiensis in Colombia and R. pallescens in Panamá, supports a co-evolutionary association between parasites and vectors. Infection, Genetics and Evolution. 5 (2): 123-129.
Urrea, D.A., Herrera, C.P., Falla, A., Carranza, J.C., Cuba-Cuba, C., Triana-Chávez, O., Grisard, E.C., Guhl, F., Vallejo, G.A. 2011. Sequence analysis of the spliced-leader intergenic region (SL-IR) and random amplified polymorphic DNA (RAPD) of Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius ecuadoriensis, R. colombiensis, R. pallescens and R. prolixus suggests a degree of co-evolution between parasites and vectors. Acta Tropica. 120: 59-66.
Vallejo, G.A. 1984. Diferenciación entre las formas de desarrollo de Trypanosoma cruzi y las formas de desarrollo de Trypanosoma rangeli en el intestino del vector Rhodnius prolixus. Tesis para optar el título de Magister en Micro-biología. Universidad de los Andes de Bogotá. 335 pp.
Vallejo, G.A., Marinkelle, C.J., Guhl, F., de Sánchez, N.1988. Comportamiento de la infección y diferenciación morfológica entre Trypanosoma cruzi y T. rangeli en el intestino del vector Rhodnius prolixus. Revista Brasileira de Biología. 48 (3): 577-587.
Vallejo, G.A. & Marinkelle, C.J. 1992. Estudio sobre la presencia de neuraminidasa en Rhodnius prolixus infectado con Trypanosoma rangeli. Revista Latinoamericana de Microbiología. 34: 91-94.
Vallejo, G.A., Guhl, F., Carranza, J.C., Lozano, L.E., Sánchez, J.L., Jaramillo, J.C., Gualtero, D., Castañeda, N., Silva, J.C., Steindel, M. 2002. KDNA markers define two major Trypanosoma rangeli lineages in Latin-America. Acta Tropica. 81 (1): 77-82.
Vallejo, G.A., Guhl, F., Carranza, J.C., Moreno, J., Triana, O., Grisard, E. 2003. Parity between kinetoplast DNA and miniexon gene sequences supports either clonal evolution or speciation in Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius colombiensis, R. pallescens and R.prolixus in Colombia. Infection, Genetics and Evolution. 3 (1): 39-45.
Vallejo, G.A., Guhl, F., Schaub, G.A. 2009a. Triatominae-Trypanosoma cruzi/T. rangeli: Vector-Parasite Interactions. Acta Tropica. 110: 137-147.
Vallejo, G.A., Guhl, F., Carranza, J.C., Herrera, C., Urrea, D.A., Falla, A., Zabala, D., Villa, L.M. 2009b. Trypanosoma cruzi population variability in Colombia: Possible co-evolution in different vector species. Revista de la Sociedad Brasilera de Medicina Tropical. 42 (Suplemento II): 27-34.
Zabala, D, Carranza, J.C., Urrea, D.A., Guhl, F., Jaramillo, N., Teixeira, M.M., Vallejo, G.A. 2011. Respuesta inmune diferencial de triatominos contra Trypanosoma cruzi y T. rangeli. Rev. Asoc. Col. Cienc. Biol. (Col.). 23: 134-143.
Zingales, B., Andrade, S.G., Briones, M.R., Campbell, D.A., Chiari, E., Fernandes, O., Guhl, F., Lages-Silva, E., Macedo, A.M., Machado, C.R., Miles, M.A., Romanha, A.J., Sturm, N.R., Tibayrenc, M., Schijman, A.G. 2009. A new consensus for Trypanosoma cruzi intraspecific nomenclature: Second revision meeting recommends Tcl to TcVI. Mem Inst Oswaldo Cruz 104:1051-1054.
Zingales, B., Miles, M.A., Campbell, D.A., Tibayrenc, M., Macedo, A.M., Teixeira, M.M., Schijman, A.G., Llewellyn, M.S., Lages-Silva, E., Machado, C.R., Andrade, S.G., Sturm, N.R. 2012. The revised Trypanosoma cruzi subspecific nomenclature: Rationale, epidemiological relevance and research applications. Infect. Genet. Evol. 12 (2): 240-53. doi: 10.1016/j.meegid.2011.12.009
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